צפיה בהודעה בודדת
ישן 26-07-06, 14:49   #2
ran_z
חבר פעיל
 
הסמל האישי שלran_z
 
תאריך הצטרפות: Jan 2006
הודעות: 7,826
ברירת מחדל

המשך:

שריר ה- gastrocnemius קיבל גירוי חשמלי של V5 במשך msec 0.05.
תוצאות המחקר הראו שכאשר השוו בין עוצמת כיווץ השריר ברגל הפצועה לרגל הלא פצועה (החומר הוזרק לשני הרגלים) באותה חיה התקבלו תוצאות מעניינות.
ביום הארבעה עשר בקבוצת הסטרואידים האנאבוליים השרירים הפצועים היו חזקים יותר מאשר השרירים הבלתי פצועים! אם כי ההבדל הזה לא הגיע למשמעות סטטיסטית לא ב- twitch ולו בכיווץ הטטני.
בשאר הקבוצות או שחל ניוון או שלא היה שינוי.
כאשר השוו את חוזק הכיווץ בין הקבוצות הטיפול השונות גילו שביום ה-14 ההשוואה בין קבוצת הביקורת והסטרואידים האנאבוליים גילתה שהשרירים הפצועים בקבוצה האנאבולית היו משמעותית יותר חזקים מאשר השרירים הפצועים בקבוצת הביקורת. בכוח ה-twitch ובכיווץ הטטני לא היה הבדל משמעותי בין השרירים הבריאים בקבוצה
האנאבולית לעומת הביקורת.
תוצאות אלו מבדיקת יכולת יצירת הכוח מראות שסטרואידים אנאבוליים יכול להיות אפקט מועיל על השריר המתרפא בטווח הארוך, הרעיון שהסטרואידים האלה מאיצים את תהליך הריפוי הוא לא חדש עוד משנת 1967 גילו שנגזרת של טסטוסטרון (methanndrostenolone) הגבירה את מספר התאים הדלקתיים כמו גם את תאי ה-Progenitor של השריר בשריר הפצוע (Sloper & Pegrum 1967).
במחקר הזה ניתן לראות שבטווח הקצר היה אפקט מועט יחסית של הסטרואידים האנאבוליים על השריר המתרפא מול קבוצת הביקורת ולשריר הבריא בצד הקונטראלטרלי, אולם בטווח הארוך השרירים הפצועים היו משמעותית יותר חזקים מאשר השרירים של קבוצת הביקורת בכוח ה-twitch ביום ה-14 .
בכוח ההתכווצות הטטנית בשרירים האלה נראתה מגמה דומה ושנחוצה כנראה תקופת זמן יותר ארוכה כדי לראות את האפקטים המלאים של הסטרואיד האנאבולי.
השרירים הלא פצועים בקבוצה האנאבולית לא נהיו יותר חזקים מהשרירים הלא פצועים
בקבוצת הביקורת, על כן ניתן להניח שזה לא סביר שהעלייה בחוזק השריר היא בגלל הבדלי הגודל שבין החיות, יכול להיות שהאפקט המועדף המשפיע על כוח ה-switch הוא בגלל האפקט הדיפרנטיאלי של הסטרואידים האנאבוליים על סוגי סיב השריר השונים שמגויסים ב-twitch מול ההתכווצות הטטנית, מחקרים אחרים גם הראו את האפקט הספציפי לסוג הזה של סיב של סטרואידים אנאבוליים.
בנוסף להפיכתם של השרירים בקבוצה האנאבולית הפצועים ליותר חזקים מאשר השרירים הפצועים בקבוצת הביקורת הם הפכו גם ליותר חזקים מהשרירים הבריאים בכל המקרים (קבוצת ביקורת, סטרואידים וקורטיקוסטרואידים) את התופעה המעניינת הזו אפשר להסביר אם אנחנו חושבים על הצורה האפשרית של פעולת הסטרואידים האנאבוליים כפי שזה תואר על ידיHavpt ו- Rovere (1984) נראה שהסטרואידים האלה פועלים כנגד המצב הקטבולי בין אם זה נגרם ע"י אימון גופני מופרז, תת תזונה או פציעת שריר נרחבת ועל כן השרירים הפצועים שהפגינו מצב קטבולי יותר אקוטי הרוויחו יותר מהנוכחות של הסטרואיד האנאבולי.
המחקר הזה נעשה בצורה מהימנה בזכות יכולת שיחזור הפציעה, גירוי הכיווץ השווה ומדידת הכיווץ הטטני והבודד במכשיר מדויק .
ניתן להסיק ממחקרים אלו שיש השפעה של הסטרואידים האנאבוליים על חוזק השריר בעיקר בעקבות אימון הגורמות לפציעות מיקרוסקופיות וכאשר מצב זה אינו קיים היה הבדל בין הרגלים הלא פצועות בין קבוצת הביקורת לקבוצת הסטרואידים האנאבוליים
מה שמחזק את הטענה שסטרואידים אנאבוליים אינו כדור שלוקחים ומצפים לתוצאה אלא דורש תנאים מקדימים על מנת לצפות לתוצאה כגון דיאטה נכונה ואימון.

מאפייני הכיווץ של סיבי השריר
הפרמטר האחרון שנבדק הוא מאפייני הכיווץ של השריר כתגובה לשימוש בסטרואידים אנאבוליים.
ראינו כבר שכאשר בדקו את עוצמת הכיווץ הטטני והבודד היו הבדלים בין הקבוצות השונות ושלטווח ארוך הייתה השפעה לסטרואידים האנאבוליים על מאפיין הכיווץ הזה אבל כדי להבין טוב יותר את המכניזם התאי של פעולת הסטרואידים על המערכת המוטורית נערך מחקר נוסף ע"יRengnier & Herrera (1992) בו נבדקו ואופיינו האפקטים של הטסטסטרון על שרירי הזרוע הקדמית ועל החיבור הנוירומוסקולרי (NMJ) .
מאפייני הכיווץ של ה-Flexor Carpi Redialis (FCR) וה- Coracoradialis (CR) נמדדו בצפרדעים זכרים עם דרגות גבוהות ונמוכות של טסטוסטרון.
מאפייני הכיווץ של ה- iliofibularis (IL) שהוא שריר רגל, נמדד לשם השוואה.
כדי לבצע ניסוי זה סירסו את כל הצפרדעים ולאחר מכן ניתחו אותם והשתילו למחציתם צינורית עם טסטוסטרון וצפרדעים אלו כונו קבוצת CT (castrated & testosteron) ובחצי השני של הקבוצה הושתלה צינורית ריקה ללא חומר והם כונו קבוצת C (castrated), ההשתלה בקבוצה זו נערכה רק כדי ליצור תנאים כמה שיותר שווים בין הקבוצות.
קבוצה נוספת של צפרדעים שימשה כקבוצת ביקורת וכינויה U והם לא סורסו ולא נותחו.
לאחר שמונה שבועות הצפרדעים הורדמו למוות ונעשו הכנות לניסוי.
בשלב הראשון חשפו את השרירים וחיברו אותה למכשיר המודד כוח איזומטרי של שריר (isometricforce transducer) .
כיווץ השריר הופק על ידי שני דרכים:
1.גירוי שרירי ישיר (direct stimulation), השריר קיבל גירוי חשמלי ישיר במשך 2-1 m/sec בתדירויות שונות 50H2, 10H2,1H2 לשנייה.
2.גירוי עצבי, גירוי של עצב ספינלי של אותו שריר למשך 0.1m/sec .
זמן הכיווץ (contraction time) נמדד כזמן מהתפתחות המתח ועד לשיא (peak) של
ה- twitch וזמן ההרפיה (relaxation time) הנו משיא ה- twitch ועד סופו.
ראינו שבגירוי ישיר בשריר ה-FCR זמן הכווץ לא הושפע ע"י הטסטוסטרון אך זמן ההרפיה היה ארוך יותר למחצית זמן ההרפיה ב- 27% וב- 90% זמן הרפיה היה 42% ארוך יותר בשרירי CT מאשר C.
בגירוי עצבי הטסטוסטרון לא השפיע על זמן הכיווץ אך זמן ההרפיה היה ארוך יותר ב- 51% למחצית זמן ההרפיה וב- 76% ל- 90% מזמן ההרפיה בשרירי CT.
בכיווץ הטטני שהופק ע"י גירוי ישיר בתדירות של 50H2 בשריר FCR היה ב- 86% גדול יותר בשרירי CT מאשר בשרירי C.
והממוצע של אזור החתך הרוחבי בשרירי FCR היה ב- 84% גדול יותר בשרירי CT תוצאות אלה מעידות על כך שלטסטוסטרון אין בעצם השפעה על מתח שריר ספציפי.
בכיווץ הטטני שהופק ע"י גירוי עצבי ב- FCR בתדירות של H250 הראה ירידה של 53% במתח הכיווץ בשריר ה- CT מול גירוי ישיר בשרירי ה- CT ואילו בין שרירי C היה הבדל של 14% בלבד, ההבדל הגדול בין הגירוי הישיר לגירוי העצבי בשרירי CT יכול להעיד על כך שטסטוסטרון מוריד את יעילות הסינפסה ולכן זה לא קרה בין שרירי ה-C בצורה משמעותית.
ראינו גם שבשרירי CT בין אם זה בגירוי ישיר או עצבי הסיבים באזור הכתף בשריר FCR התכווצו ונרפו לאט יותר מאשר הסיבים באזור המרפק, ואילו בקבוצת C לא היה הבדל בין המרפק לכתף בזמן הכיווץ או ההרפיה ולכן ניתן להסיק על ההשפעה של הטסטוסטרון על אזורים שונים בשריר יותר מאזורים אחרים ולעיתים גם על שרירים אחרים כמו שראינו כאן בשרירי IL ו- CR שהושפעו בצורה מועטה מהטסטוסטרון ולא היו הבדלים משמעותיים בזמן הכיווץ וזמן ההרפיה.
חלק מהמחקרים שנעשו בעבר הציגו תוצאות זהות ונתנו עדות נוספת לכך שאנדרוגנים משפיעים על קינטיקת הכיווץ,לדוגמא מדדו את משך ה-twitch של שרירי FCR ב- Rana temporaria וגילו שהוא קצר במהלך הקיץ שבו רמת האנדרוגן נמוכה, וארוך בסתיו כאשר רמת האנדרוגן מתחילה לעלות (Melichna et al.1972) .
חלק נוסף מהמחקרים קיבלו תוצאות הפוכות לדוגמא סירסו חולדות וראו שזמן הכיווץ וההרפיה של שריר ה- levetor ani התארך מה שמראה בעצם שחוסר באנדרוגנים במקרה זה גרם לתוצאה הפוכה מהתוצאות של המחקרים הקודמים וכמו כן כאשר נתנו טיפול בטסטוסטרון לחולדות אלו המגמה התהפכה (Vyskocil & Gutmann,1977).
ישנם מספר מכאניזם אפשריים שבעזרתם ניתן לנסות ולהבין איך הטסטוסטרון יכול היה להאט את כיווץ סיבי השריר באזור הכתף במחקרו שלRagnier& Herrera שעסקנו בו בהרחבה בתחילת פרק זה ,אפשרות אחת היא שטסטוסטרון משפיע ישירות על המבנה של ה -myosin בסיבי השריר .Lyons,Kelly & Rubinstein (1986) הראו שינויים בין מבנה ה-myosin בשרירי ה- temporalis בין נקבה לזכר בחזירי ים ויותר מכך כאשר נתנו טסטוסטרון לנקבה או לחילופין סירסו את הזכר ההבדלים נעלמו.
אפשרות נוספת להשפעתו של הטסטוסטרון היא ע"י שינויים ב-sacroplasmic retinaculum שיכול להאריך את הכיווץ האיזומטרי (Saborido,Fulgencio & Megias et al 1991) או ע"י השפעה על הקלציום בתא השריר אך דבר זה עדיין בגדר השערה.
תוצאות מחקר זה שהינו המקיף והמלא ביותר שנעשה עד היום אינו נותן לנו תשובה בנוגע להשפעת הסטרואידים האנאבוליים על שרירי השלד האנושי ותחום זה עדיין זקוק למחקרים נוספים על מנת לאשש זאת סופית.



ביבליוגרפיה



Adams, G.R., B.M. Hather, K.M. Baldwin, and G.A. Dudly. 1993.Skeletal muscle myosin heavy chain composition and resistance training. J Appl. Physiol. 74:911-915.

Allemeier, C.A., A.C. Fry, P. Johnson, R.S. Hikida, F.C. Hagerman, and R.S. Staron. 1994.Effects of sprint cycle training on human skeletal muscle. J. Appl. Physiol. 77:2385-2390

Allen, D.L., Monke, S.R., Talmadge, R.J., Roy, R. R & Edgerton, V.R. 1995. Plasticity of myonuclear number in hypertrophied and atrophid mammalian skeletal muscle fibers. J Appl Physiol. 78:1969 - 1976.

Allen, D.L., Roy, R. R & Edgerton, V.R. 1999. Myonuclear domains in muscle adaptation and disease. Muscle Nerve 22: 1350-1360.

Alway, S.E., Grumbt, W.H., Gonyea, W.J. & Stray-Gundersen, J. 1989. Contrasts in muscle and myofibers of :):):):):) male and female bodybuilders. J. Appl Phsiol. 67: 24-31

American College of Sport Medicine. 1977.Position statement on the use and abuse of anabolic-androgenic steroids in sports. Med Sci Sports.9(4):6-7.

American College of Sport Medicine. 1984.position stand on the use of anabolic-androgenic steroids in sports. Am J Sport Med.12:13-8.

Antonio, J. & Gonyea, W.J. 1993. Skeletal muscle fiber hyperplasia. Med Sci Sports Exerc., 25: 1333-1345.

Appell , H.J., Forsberg, S. & Hollman, W. 1988. Satellite cell activation in human skeletal muscle after training: evidence for muscle fiber neoformation. Int. J. Sports Med., 9: 297-199.

Banker, B.Q., and A.G. Engel. 1994. Basic reactions of mucsle. In: Myology, 2nd Ed., A.G. Engel and C. Franzini-Armstrong (Eds.). New York: McGraw-Hill, pp. 832-888.

Bekett AH, Cowan DA. 1979.Misuse of drugs in sport. Br J Sports Med.12:185-94.

Bechett H.H. 1976. Problems of anabolic steroid in sport, Olympics review pp. 591-627.

Bhasin, S., Storer, T.W., Berman, N., Callgari, C., Clevenger, B. Phillips, J. Bunnell, T.J. , Tricker, R., Shirazi, A. & Casaburi, R. 1996. The effects of supraphysiologic doses of testosterone on muscle size and strength in normal men. N. Engl. Med., 335: 1-7.

Bischoff, R., & Holtzer, H. 1969. Mitosis and the process of differentiation of mygenic cells in vitro. J. Cell Biol, 41: 188-200.

Bishoff, R. 1994. The satellite cell and muscle regeneration. In: Myology. Vol. 1 A.G. Engel & C. Franzini-Armstrong (ed.). Mc Graw-Hill, NY. 97-117.

Bricout, V., Germain, P. Serrurier, B. & Guezennec, C. 1994. Changes in restosterone muscle receptors: effects of an androgen treatment on physically trained rats. Cell Mol Biol, 40: 291-294.

Butler-Browne, G.S., and R.G. Whalen. 1984. Myosin isozyme transitions occurring during the postnatal development of the rat soleus muscle. Dev. Biol. 102:324-334.

Cabric, M. & James, N.T., 1983. Morphometric analyses on the muscles of exercise trained and untrained dogs. Am J Anat. 166: 359-369.

Campion, D.R. 1984. The muscle satellite cell: a review. Int Rev Cytol. 87, 225-251.

Celotti, F., and P. Negri-Cesi. 1992.Anabolic steroids: a veview of their effects on the muscles, of their possible mechanisms of action and of their use in athletics. J. Steroid. Biochem. Mol. Biol. 43:469-477.

Cheek, D.B. 1985. The control of cell mass and replication. The DNA unit – a personal 20-year study. Early Hum Dev. 12:221-239.

Chesley, A., Macdougali, J.D., Tarnopolsky, M.A., Atkinson, S.A. & Smith, K. 1992. Changes in human muscle protein synthesis after resistance exercise. J Appl Physiol. 73:1383-1388.

Cowart V. 1987. Steroids in sports: after four decades, time to return these genies to bottie? JAMA.257:421-3.

Darr, K.C. & Schultz, E. 1987. Exercise-induced satellite cell activation in growing and mature skeletal muscle. J Appl Physiol. 63:1816-1821.

Deschenes MR, Maresh CM, Armstrong LE, Covault J, Kraemer WJ & Crivello JF. 1994. Endurance and resistance exercise induce muscle fiber type specific responses in androgen binding capacity. J Steroids Biochem Mol Biol. 50:175-79.

Dorlochter, M., Astrow, S.H. & Herrera, A.A. 1994. Effects of testosterone on a sexually dimorphic frog muscle: repeated in vivo observations and androgen receptor distribution. J Neurobiol., 25: 897-916.

Doumit, M.E., Cook, D.R. & Merkel, R.A. 1996. Testosterone up-regulates androgen receptors and decrease differentiation of porcine mygenic satellite cells in vitro. Endocrinology, 137:1385-1394.

Dux, L., B.J. Cooper, C.A. Sewry, and V. Dubowitz. 1993.Notechis scutatus venom increases the yield of proliferating muscle cells from biopsies of normal and dystrophic canine muscle: a possible source for myoblast transfer studies. Neuromusc. Disord. 3:23-9.

Frederickson, R & Sonenberg, N. 1993. EIF-4E phosphorylation and the rgulation of protein synthesis In: Translational regulation of gene expression. Vol. 2. J. Ilan (ed.). Plenum Press. NY. 143-162.

Fry, A.C., C.A. Allemeir , and R.S. Staron. 1994.Correlation between percentage fiber type area and myosin heavy chain content in human skeletal muscle. Eur. J. Appl. Physiol. 68:246-51.

Galavazi, G., and J.A. Szirmal. 1971. Cytomorphometry of skeletal muscle: the influence of age and testosterone on the rat m. levator ani. Z. Zellforsh, Mikrosk. Anat. 121:507-530.

Giddings, C.J. & Gonyea, W.J. 1992. Morphological observations supporting muscle fiber hyperplasia following weight-lifting exercise in cats. Anat Rec. 233:178-195.

Goldberg, A.L., Etilinger, J.D., Godspink, D.F & Jablecki, C. 1975. Mechanism of work-induced hypertrophy of skeletal muscle. Med Sci Sports. 7, 185-198.

Goldspink, G. 1983. Alterations in myofibril size and structure during growth, exercise and changes in environmental temperature. In: Handbook of Physiology, L.D. Peachey, R.H. Adrian, and S.R. Geiger (Eds.) Bethesda, MD: Americal Physiological Society, pp. 539-554.

Gonyea, W.J. 1980.Role of exercise in including increases in skeletal muscle fiber number. J. Appl. Physiol. 48:421-426.

Griggs, R.C. , W. Kingston, R.F. Jozefowicz, B.H. Herr, G. Forbes and D. Halliday. 1989.Effect of testosterone on muscle mass and muscle protein synthesis. J. Appl. Physiol. 66:498-503.

Haupt HA, Rovere GD. 1984. Anabolic steroids: a review of the literature. Am J Sports Med. 12:469-84.

Hyppa, S., Karvonen, U., Rasanen, L.A., Persson, S.G & Poso, A.R. 1997. Androgen receptors and skeletal muscle composition in trotters treated with nandrolone laureate. Zentralbl I eterinarmed A, 44: 481-491.

Illa, I., M. Leon-Monzon, and M.C. Dalakas. 1992.Regenerating and denervated human muscle fibers and satellite cells express neural cell adhesion molecule recognized by monoclonal antibodies to natural killer cells, Ann. Neurol. 31:46-52.

Inoue, K., Yamasaki, S., Fushiki, T., Kano, T., Moritani, T., Itoh, K. & Sugimoto, E. 1993. Rapid increase in the number of androgen receptors following electrical stimulation of the rat muscle. Eur J Appl Physiol. 66 : 134-140.

Jannsen, P.J., Brinkmann, A.O., Boersma, W.J & Van-Der-Kwast, T.H. 1994. Immunohistochemical detection of the androgen receptor with monoclonal antibody F39.4 in routinely processed, paraffin-embedded human tissues after microware pre-treatment. J Histochem Cytochem., 42:1169- 1175.

John P. Oshea ed. D. 1978. Anabolic steroid in sport: a biphysiological evaluation, nutration reportras international , june, 17 no. 6 pp. 607-627.

Joubert, Y., and C. Tobin. 1989.Satellite cell proliferation and increase in the number of myonuclei induced by testosterone in the levator ani muscle of the adult female rat. Dev. Biol. 131:550-557.

Kadi, F. & Eriksson, A., Butler-Browne, G.S & Thornell, L-E. 1999. Cellular adaptation of the trapezius muscle in strength trained athletes. Histochemistry and Cell Biology,111:189-195.

Kadi, F. & Eriksson, A., Holmner,S. & Thornell, L-E. 1999. Effect of anabolic steroids on the muscle cells of strength trained athletes.Medicine & Science in Sports & Exercise, 31(11):1528-1534.

Kennedy, J.M., B.R. Eisenberg, S.K. Reid, L.J. Sweeney, and R. Zak. 1988.Nascent muscle fiber appearance in overloaded chicken slow-tonic muscle. Am. J. Anat. 181:203-215

Kimura, N., Mizokami, A., Oonma, T., Sasano, H. & Nagura, H. 1993. Immunocytochemical locatiozation of androgen receptor with polyclonal antibody in paraffin-embedded human tissues. J Histochem Cytochem., 41: 671-678.

Kochakian, C.D. & Tillotson, C. 1957. Influence of several C19-steroids on the growth of individual muscles of the guinea pig. Endocrinology, 60: 601-618.

Kochakian C.D. & murlin JR. 1935.Effect of male hormon on protein and energy metabolism of castrate dogs. J Nutr. 10:437-59.

Kochakian C.D.& murlin JR. 1936. The relationship of the syntetic male hormon, androstenedione, to the protein and energy metabolism of castrate dogs and the protein metabolism of a normal dog. Am J Physiol. 117:642-57.

Kraemer, W.J., J.F. Patton, S.E. Gordon et al. 1995.Compatibility of high-intensity strength and endurance training on hormonal and skeletal muscle adaptations. J. Appl. Physiol. 78:976-989.

Kreig, M. 1976. Characterization of the androgen receptor in the skeletal muscle of the rat. Steroids, 28: 261-274.

Kuipers. H., J.A. Wunen, F. Hartgens, and S.M. Willems. 1991.Influence of anabolic steroids on body composition, blood pressure, lipid profile and liver functions in body builders. Int. J. Sports. Med. 12:413-418.

Larsson, L. & Tesch, P.A. 1986. Motor unit fibre density in extremely hypertrophied skeletal muscles in man. Electrophysiological signs of muscle fibre hyperplasia. Eur J Appl Physiol. 55: 130-136.

Laurent, G., Sparrow, M. & Millward, D. 1978. Turnover of muscle protein in the fowl. Changes in rates of protein synthesis and breakdown during hypertrophy of the anterior and posterior latissimus dorsi muscle. Biochem J, 176:407-417.

Lamb DR. 1984. Anabolic steroids in athletics: how well do they work and how dangerous are they? Am J Sports Med. 12:31-8.

Lyons GE, Kelly AM & Rubinstein NA. 1986. Testosteron-induced changes in contractile protein isoforms in the sexually dimorphic temporalis muscle of the guinea pig. Journal of Biological Chemistry 26:13278-84.

Macdougali, J.D., Sale, D.G., Elder, G.C & Sutton, J.R. 1982. Muscle ultrastructural characteristics of :):):):):) powerlifters and bodybuilders. Eur J Appl Physiol. 48 : 117-126.

Macdougali, J.D., Gibala, M.J., Tarnopolsky, M.A., Macdonald, J.R. Interisano, S.A. & Yarasheski, K.E. 1995. The time course for elevated muscle protein synthesis following heavy resistance exercise. Can J Appl Physiol., 20: 480- 486.

Mauro, A. 1961. Satellite cell of skeletal muscle fibers. J. Biophys. Biochem. Cytol, 9: 493-495.

Max, S.R., Mufti, S. & Carlson, B.M. 1981. Cytosolic androgen receptor in regenerating rat levator ani muscle. Biochem J., 200: 77-82.

Mccall, G.E., Byrnes, W.C., Dickinson, A., Pattany, P.M, & Fleck, S.J., 1996. Muscle fiber hypertrophy, hyperplasia, and capillary density in college men after resistance training. J Appl Physiol. 81: 2004-2012.

Mccormick, K.M. & Schultz, E. 1992. Mechanisms of nascent fiber formation during avian skeletal muscle hypertrophy. Dev Biol., 150: 319-334.

McLoon, L.K., and J. Wirtschafter. 1993. Regional differences in the subacute response of rabbit orbicularis oculi to bupivacaine-induced myotoxicity as quantified with a neural cell adhesion molecule immonohistochemical marker. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 34:3450-3458.

Melichna J, Gutmann AH & Stichova J. 1972. Sexual dimorphism in contraction properties and fibre pattern of flexor carpi radialis muscle in the mail frog. Experientia 28:89-91.

Melvin H.Williams. 1974.Drugs and athletic performance, chpter 4, pp 87.

Moss, F.P. & Leblond, C.). 1971. Satellite cells as the source of nuclei in muscles of growing rats. Anat Rec. 170: 421-435.

Nygarrd, E. & Nielsen, E. 1978. Skeletal muscle fibre capillarisation with extreme endurance training in man. In: Swimming Medicine IV. Vol. (6). B. Eriksson & B. Furberg (ed.). University Park Press. Baltimore. 282-293.

Oldfors, A., A.R. Moslemi, I.M. Fyhr, E. Holme, N.G. Larsson, and C. Lindberg. 1995. Mitochondrial DNA deletions in muscle fibers in inclusion body myositis. J. Neuropathol. Exp. Neurol. 54:581-587.
Trapman, J., Klaassen, P., Kuiper, G.G., Van-Der-Korput, J.A., Faber,

P.W., Van-Rooij, H.C., Geurts-Van-Kessel, A., Voorhorst, M.M., Mulder, E. & Brinkmann, A.O. 1988. Cloning, structure and expression of a cDNA encoding the human androgen receptor. Biochem Biophys Res Commun., 153: 241-248.

Phillips, S.M., Tipton, K.D., Aarsland, A., Wolf, S.E. & Wolfe, R.R. 1997. Mixed muscle protein synthesis and breakdown after resistance exercise in humans. Am J Physio., 273: E99-107.

Putman, C., Dusterhoft, S. & Pette, D. 1998. Changes in satellite cell content and mysin isoforms in low fre3quency stimulated fast muscle of hypothyroid rat. J Appl Physio, 86: 40-51.

Regnier M & Herrera AA. 1990.Differential sensitivity of androgens within sexually dimorphic muscle of msle frogs. Society for Neuroscience Abstracts 16:329.

Rogozkin, V. 1979.Metabolic effects of anabolic steroid on skeletal muscle, Med. Sci. Sports. 11:160-163.

Rosenblatt, J.D & Parry, D.J. 1992. Gamma irradiation prevents compensatory hypertrophy of overloaded mouse extensor digitorum lungus muscle. J Appl Physiol., 73: 2538-2543.

Rosenblatt, J.D., Yong, D. & Parry, D.J. 1994. Satellite cell activity in required for hypertrophy of overloaded adult rat muscle. Muscle Nerve., 17: 608-613.

Roy, R.R., Monke, S.R., Allen, D.L & Edgerton, V.R. 1999. Modulation of myonuclear number in functionally overloaded and exercised rat plantaris fibers. J Appl Physiol, 87: 634-642.

Ryan AJ. 1981. Anabolic steroids are fool's gold.Fed Proc. 40:2682-8.

Saborido A, Fulgencio JV & Megias A. 1991. Effect of anabolic steroids on mitochoondria and sarcotubular system of skeletal muscle. Journal of Applied Physiology 70:1038-43.

Salmons, S. 1992. Myotrophic effects of an anabolic steroid in rabbit limb muscles. Muscle Nerve. 15: 806-812.

Sar. M., D.B. Lubahn, F.S. French, and E.M. Wilson. 1990. Immunohistochemical localization of the androgen receptor in rat and human tissues, Endocrinology 127:3180-3186.

Schiaffino, S., Bormioli, S.P & Aloisi, M. 1976. The fate of newly formed satellite cells during compensatory muscle hypertrophy. Virch. Arch B Cell Pathol., 21:113-118.

Schiaffino, S., Bormioli, S.P & Aloisi, M. 1972. Cell proliferation in rat skeletal muscle during early stages of compensatory hypertrophy. Virch, Arch B Cell Pathol., 11: 268-273.

Schubert, W., K. Zimmermann, M. Cramer, and A. Starzinski-Powitz. 1989. Lymphocyte antigen Leu-19 as a molecular marker of regeneration in human skeletal muscle. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 86:307-311,

Schultz, E. & Mccormick, K.M. 1993. Cell biology of the satellite cell. Mol Cell Biol Hum Dis Ser., 3: 190-209.

Schultz, E & Mccormick K.M. 1994. Skeletal muscle satellite cells, Rev Physiol Biochem Pharmacol., 1213: 213-257.

Seiden, D. 1976. Quantitative analysis of muscle cell changes in compensatory hypertrophy and work-induced hypertrophy. Am J Anat., 145: 459-465.

Shafiq, S., Gorycki, M. & Mauro, A. 1968. Mitosis during postnatal growth in skeletal and cardic muscle of the rat. J Anat, 103:135-141.

Snow. M.H. 1990. Satellite cell response in rat soleus muscle undergoing hypertrophy due to surgical ablation of synergists. Anat Rec., 227: 437-446.

Staron, R.S., R.S. Hikida, F.C. Hagerman, G.A. Dudley, and T.F. Murray. 1984. Human skeletal muscle fiber type adaptability to various workloads. J. Histochem. Cytochem. 32:146-152.

Staron, R.S., E.S. Malicky, M.J. Leonardi, J.E. Falkei, F.C.. Hagerman, and G.A. Dudley. 1990. Muscle hypertrophy and fast fiber type conversions in heavy resistance-trained women. Eur. J. Appl. Physiol. 60:71-79.

Stockdale, E & Holtzer, H. 1961. DNA synthesis and myogenesis. Exp Cell Res, 24: 508- 520.

Stockdale, F.E. 1997. Mechanisms of formation of muscle fiber types. Cell Struct Funct., 22: 37-43.

Szarski, H. 1976. Cell size and nuclear DNA content in vertebrates. Int. Rev. Cytol. 44:93-111.

Takeda, H., Chodak, G., Mutchnik, S., Nakamoto, T. & Chang, C. 1990. Immunohisochemical localization of androgen receptors with mono and polyclonal antibodies to androgen receptor. J Endocrinol. 126: 17-25.

Tamaki, T., Akatsuka, A., Tokunaga, M., Ishige, K., Uchiyama, S. & Shiraishi, T. 1997.Morphological and biochemical evidence of muscle hyperplasia following weight-lifting exercise in rat. Am. J. Physiol,273:C246-C256.

Tesch, P.A. & Larsson, L. 1982. Muscle hypertrophy in bodybuilders. Eur J Appl Physiol., 49: 310-306.

Tipton, K.D., Ferrando, A.A., Williams, B.D. & Wofle, R.R. 1996. Muscle protein metabolism in female swimmers after a combination of resistance and endurance exercise. J Appl Physiol., 81: 2034-2038.

Tseng, B.S., Kasper, C.E. & Edgerton, V.R. 1994. Cytoplasm-to-myonucleus ratios and succinate dehydrogenase activities in adult rat slow and fast muscle fibers. Cell Tissue Res., 275: 39-49.

Vyskocil F & Gutmann E. 1969. Spontaneous transmitter release from motor nerve endings in muscle fibres of castrated and old animels. Experientia 25:945-46.

Wade N. 1972. Anabolic steroids: Doctors denounce them, but athletes aren't listening (news). Science 176:1399-1403.

Watkins, S.C. & Cullen, M.J. 1988. A quantitative study of myonuclear and satellite cell nuclear size in Duchenne’s muscular dystrophy, polymyositis and normal human skeletal muscle. Anat Rec., 222: 6-11.

Wilson, J.D. 1988. Androgen abuse by athletes. Endocr Rev. 9: 181-199.

Winchester, P.K., Davis, M.E., Alyaw, S.E & Gonyea, W.J. 1991. Satellite cell activation in the stretch-enlarged anterior latissimus dorsi muscle of the adult quail. Am J Physiol., 260: C206-212.

Winchester, P.K. & Gonyea, W.J. 1992. A quantitative study of satellite cells and myonuclei in stretched avian slow tonic muscle. Anat Rec., 232:369-377.

Wong, T.S. & Booth, F.W. 1990. Protein metabolism in rat gastrocnemius muscle after stimulated chronic concentric exercise, J Appl Physiol. 69: 1709-1717.

Yamada, S., Buffinger, N., Dimario, J & Strohman, R.C. 1989. Fibroblast growth factor is stored in fiber extracellular matrix and plays a role in regulating muscle hypertrophy. Med Sci Sports Exerc., 21: S173-180.

Zurer PS. 1984. Drugs in sports. Chem Eng News. Apr 30:69-78.
__________________
מדריך חדר-כושר מוסמך, וינגייט.


כשתבין...תגדל!




לפניות, שאלות, בקשות, המלצות, תלונות - ליחצו כאן.
ran_z מנותק   הגב עם ציטוט